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我司96孔板的试剂盒可以检测85个样本，11个孔做标准、空白对照孔。也就是说ELISA检测要求严格按照试剂说明书要求，每次试验每块扳上都要设置以下3项对照，即设置阴性、阳性和空白对照。

在做蛋白提取实验中，也许有的同学都会提出这样的疑问：每次提蛋白后会将样品在短时间内重复2-3次WB，但是每次跑出的条带趋势不一致，上样量和其他条件都没有变，内参基本是整齐稳定的，不知道为什么目的条带就是不一致？这是什么原因呢？

想要流式的染色结果好，必须用单细胞悬液，细胞团和细胞碎片容易堵塞进样管。从固态组织样本中制备单细胞悬液需要借助机械分离和（或者）酶消化。操作条件和酶的选择等需要根据经验进行一定的调整。以下是将四种常见的流式样本制备成单细胞悬液的方法

小分子抗原或半抗原因缺乏可作夹心法的两个以上的位点，因此不能用双抗体夹心法进行测定，可以采用竞争法模式。其原理是标本中的抗原和一定量的酶标抗原竞争与固相抗体结合。标本中抗原量含量愈多，结合在固相上的酶标抗原愈少，最后的显色也愈浅。小分子激素、药物等 ELISA 测定多用此法。

我们一般是先泡酸过夜，清洗干净，三蒸水清洗，再用无水酒精浸泡清洗，再在工作台里用无菌水过一遍，在盖上盖子在烘箱里烤干，待烤干后，打开在超净工作台里近紫外(距离紫外灯<20cm)照射半个小时以上，效果很好，没有污染过。